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衛(wèi)生毒理學-實驗指導:實驗四 小鼠精子畸形試驗

衛(wèi)生毒理學:實驗指導 實驗四 小鼠精子畸形試驗:◎<一 目的>◎<二 原理>◎<三 儀器及試劑>◎<四 實驗步驟>◎<五 統(tǒng)計方法及結果判定>※<一 目的>掌握小鼠精子畸形試驗的基本技術  返回頂部※<二 原理>  小鼠精子畸形受基因控制,具有高度遺傳性,許多常染色體及X、Y性染色體基因直接或間接地決定精子形態(tài)。精子的畸形主要是指形態(tài)的異常,已知精子的畸形是決定精子形成的基因發(fā)生突變的結果。因此形態(tài)的改變提示有關基因及其蛋白質(zhì)產(chǎn)物的改變。小鼠精

<一 目的>

<二 原理>

<三 儀器及試劑>

<四 實驗步驟>

<五 統(tǒng)計方法及結果判定>

※<一 目的>

掌握小鼠精子畸形試驗的基本技術

  

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※<二 原理>

  小鼠精子畸形受基因控制,具有高度遺傳性,許多常染色體及X、Y性染色體基因直接或間接地決定精子形態(tài)。精子的畸形主要是指形態(tài)的異常,已知精子的畸形是決定精子形成的基因發(fā)生突變的結果。因此形態(tài)的改變提示有關基因及其蛋白質(zhì)產(chǎn)物的改變。小鼠精子畸形試驗可檢測環(huán)境因子對精子生成、發(fā)育的影響,而且對已知的生殖細胞致突變物有高度敏感性,故本試驗可用作檢測環(huán)境因子在體內(nèi)對生殖細胞的致突變作用。

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※<三 儀器及試劑>

  全部試劑除注明外,均為分析純,試驗用水為蒸餾水。
  3.1 實驗室常用設備。
  3.2 生物顯微鏡。
  3.3 甲醇。
  3.4 1%~2%伊紅染色液:稱取伊紅1~2g,溶于100mL蒸餾水備用。

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※<四 實驗步驟>

  4.1 動物
  6~8周齡(體重25~35g)。
  4.2 劑量分組
  設一個陰性對照(溶劑)組,一個陽性對照組及三個試驗組,每組至少有5只存活動物。陽性物可采用環(huán)磷酸胺40~60mg/(kg·d)或甲基磺酸甲酯(MMS)50mg/(kg·d),絲裂霉素C(MMC)1.0~1.5mg/(kg·d)。最高劑量可取最大耐受量,或分別取1/2、1/4和1/8LD50作為劑量組。經(jīng)口給予,連續(xù)5d。
  4.3 操作步驟
  4.3.1 動物處死時間:各種會計資格致突變物作用于精子的不同發(fā)育階段,可在接觸某種致突變物后不同時間出現(xiàn)精子畸形,故有條件時,可給于受試物后第一、四、十周處死動物,檢查精子形態(tài)。因為大部分化學致突變物對精原細胞后期或初級精母m.jfsoft.net.cn/hushi/細胞早期的生殖細胞較為敏感,故一般均是于首次給受試物后的第35d處死。
  4.3.2 用頸椎脫臼法處死小鼠,取出二側副睪,放入盛有適量生理鹽水(1mL)的小燒杯中或放入盛有2mL生理鹽水的平皿中。用眼科剪將副睪縱向剪1~2刀,靜止3~5min,輕輕搖動。用四層擦鏡紙或合成纖維血網(wǎng)袋過濾,吸濾液涂片?諝飧稍锖,用甲醇固定5min以上干燥。用1%~2%伊紅染色1h,用水輕沖,干燥。
  4.3.3 鏡檢:在低倍鏡下(用綠色濾光片)找到背景清晰精子重疊較少的部位,用高倍鏡順序檢查精子形態(tài),計數(shù)結構完整精子。精子有頭無尾(輪廓不清)或頭部與其他精子或碎片重疊,或明顯是人為剪碎者,均不計算,每只動物至少檢查1000個精子。
  精子畸形,主要表現(xiàn)在頭部,其次為尾部,畸形類型可分為無鉤、香蕉形、胖頭、無定形、尾折疊、雙頭、雙尾等。異常精子均應記錄顯微鏡的坐標數(shù),以備查詢。并分別記錄異常類型,以便統(tǒng)計精子畸形率及精子畸形類型的構成比。
  判斷雙頭、雙尾畸形時,要注意與二條精子的部分重疊相鑒別,判斷無定形時要與人為剪碎及折疊相鑒別。

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※<五 統(tǒng)計方法及結果判定>

   每個劑量組應分別與相應的陰性對照組進行參數(shù)統(tǒng)計方法比較,如用Wilcoson秩和檢驗法評價精子畸形陽性的標準是,畸形率至少為陰性對照組的倍量或經(jīng)統(tǒng)計有顯著意義,并有劑量反應關系。
  一般陰性對照組的精子異常率為0.8%~3.4%,供參考。但應有本實驗室所用實驗動物的自發(fā)畸形率作參考。

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